Bozza:Bemisia tabaci

Bemisia tabaci

La mosca bianca del tabacco^[1] (Bemisia tabaci^[2]), detta anche mosca bianca della patata dolce^[3][4], è una delle numerose specie di mosca bianca che attualmente sono importanti parassiti agricoli^[5]. Una revisione del 2011 ha concluso che la mosca bianca del tabacco è in realtà un complesso di specie contenente almeno 40 specie morfologicamente indistinguibili^[6].

La mosca bianca del tabacco prospera in tutto il mondo, in habitat tropicali, subtropicali e, meno prevalentemente, in quelli temperati. Le basse temperature uccidono sia gli adulti che le ninfe della specie^[7]. La mosca bianca del tabacco può essere confusa con altri insetti come il comune moscerino della frutta, ma a un'ispezione ravvicinata, la mosca bianca è leggermente più piccola e ha un colore delle ali distinto che aiuta a differenziarla dagli altri insetti.

Sebbene la mosca bianca del tabacco fosse nota negli Stati Uniti dal 1896, a metà degli anni '80 un ceppo aggressivo apparve nelle coltivazioni di stelle di Natale in Florida. Per comodità, quel ceppo fu denominato ceppo B (biotipo B), per distinguerlo dall'infestazione più lieve del precedente noto ceppo A. Meno di un anno dopo la sua identificazione, si scoprì che il ceppo B si era spostato sui pomodori e su altre colture di frutta e verdura. Nel giro di 5 anni, la mosca bianca del tabacco aveva causato oltre 100 milioni di dollari di danni all'agricoltura in Texas e in California^[5].

Uno studio del 2021 ha dimostrato per la prima volta il trasferimento genico da una pianta a un insetto: Bemisia tabaci ha acquisito infatti il gene che le permette di codificare un enzima per detossificare i glicosidi fenolici, che la pianta produce apposta per difendersi dai parassiti^[4][8][9].

Bemisia tabaci fa parte delle cento specie invasive più dannose al mondo.

Anatomia e ciclo vitale

 

Bemisia tabaci adulte su foglia verde

 

Bemisia tabaci in muta sulle foglie. Le strutture vuote argentate sulle foglie sono pellicine scartate.

Le femmine di B. tabaci depongono da 50 a 400 uova di dimensioni variabili da 0,10 a 0,25 millimetri sulla parte inferiore delle foglie. Le femmine di mosca bianca sono diploidi e nascono da uova fecondate, mentre i maschi sono aploidi e nascono da uova non fecondate. Le uova vengono deposte in gruppi e sono di piccole dimensioni, con dimensioni di 0,2 millimetri di larghezza e 0,1 millimetri di altezza. Le uova sono inizialmente di colore biancastro e virano al marrone verso la schiusa, entro 5-7 giorni. Dopo la schiusa, la ninfa di mosca bianca si sviluppa attraverso quattro stadi.

Il primo stadio, comunemente chiamato crawler, è l'unico stadio ninfale mobile. La ninfa del primo stadio può crescere fino a circa 0,3 millimetri ed è di colore verdastro e con una struttura corporea piatta^[10][11]. La ninfa mobile cammina per trovare un'area adatta sulla foglia con nutrienti adeguati e muta in uno stadio immobile. I successivi tre stadi rimangono in posizione per 40-50 giorni, fino alla muta in un adulto^[12]. Sulle foglie vengono lasciate esuvie argentate o pellicine. Gli stadi immobili appaiono di un bianco opaco. Le ninfe si nutrono pungendo la pianta con il loro apparato boccale e succhiandone i succhi^[10]. Dopo il quarto stadio, la ninfa si trasforma in uno stadio pupale in cui gli occhi diventano di un colore rosso intenso, il corpo diventa giallo e la struttura corporea si ispessisce. Questo non è un vero stadio pupale, come si trova negli Holometabola, ma ha una funzione simile. Le mosche bianche adulte sono circa quattro volte più grandi dell'uovo, con corpi giallo chiaro e ali bianche, che è attribuito alla secrezione di cera attraverso le sue ali e il corpo^[12]. Le mosche bianche del tabacco possono raggiungere fino a 0,9 millimetri di lunghezza. Mentre si nutre o riposa, l'adulto di mosca bianca ripiega le sue ali sul suo corpo come una tenda^[11].

Distribuzione

Comunità nativa/originaria

La ricerca indica che la mosca bianca del tabacco probabilmente proveniva dall'India. Poiché la mosca bianca è prevalentemente associata ad aree con climi tropicali/subtropicali, l'attenzione si sposta su come questi insetti abbiano ottenuto l'accesso alle colture in habitat con climi temperati^[12]. Un'ipotesi suggerisce che il trasferimento di piante decorative dalle regioni tropicali potrebbe aver contribuito alla diffusione della mosca bianca del tabacco in ambienti temperati. La capacità della mosca bianca di adattarsi a varie piante facilita la diffusione di pericolosi virus vegetali, che questi insetti sono noti per trasmettere^[13]. Le piante colpite dalla mosca bianca includono: pomodori, zucca, stella di Natale, cetriolo, melanzane, gombo, fagioli e cotone^[10]. Altri danni comuni alle piante causati dalla mosca bianca includono la rimozione della linfa delle piante e la rottura e la caduta delle foglie^[10].

Gamma introdotta

La mosca bianca del tabacco è un parassita agricolo invasivo presente in molte località del mondo, tra cui la Florida^[11] e la California^[14].

Impatto commerciale

La mosca bianca del tabacco è considerata una specie invasiva negli Stati Uniti, così come in Australia, Africa e diversi paesi europei. È stata classificata come parassita agricolo in Grecia intorno al 1889 e ha avuto un impatto significativo sulle colture di tabacco. La prima mosca bianca del tabacco è stata trovata negli Stati Uniti nel 1897 su una coltura di patate dolci^[15][16].

Questo piccolo insetto danneggia le piante nutrendosi e trasmettendo malattie. La mosca bianca del tabacco si nutre delle piante ospiti perforando il floema o la superficie inferiore delle foglie con la bocca e rimuovendo i nutrienti. Le aree colpite della pianta possono sviluppare macchie clorotiche, avvizzimento o caduta delle foglie. Le mosche bianche producono anche una sostanza appiccicosa chiamata melata, che viene lasciata sull'ospite^[12]. La ​​melata può indurre la crescita di fumaggini, che possono quindi ridurre la capacità delle piante di assorbire la luce. Ciò si traduce in una crescita più lenta, una resa inferiore e piante di scarsa qualità.

La mosca bianca del tabacco è anche un noto vettore di malattie delle piante. Ha trasmesso gemnivirus tra cui il virus della lattuga LIYV, il virus del pomodoro TYLCV e i virus della manioca ACMV e CBSD^[12][17].

La Bemisia tabaci è diventata un problema serio nelle colture degli Stati Uniti sud-occidentali e del Messico negli anni '80. Gli scienziati ipotizzano che questo parassita sia stato introdotto tramite piante ornamentali infestate portate negli Stati Uniti in quel periodo. Le serre di stelle di Natale della Florida sono state danneggiate dal parassita a partire dal 1986 e, nel 1991, l'infestazione si era diffusa in Georgia, Louisiana, Texas, Nuovo Messico e Arizona, arrivando a colpire i coltivatori in California, la quale produce circa il 90% del raccolto di ortaggi invernali degli Stati Uniti e ha subito danni stimati per 500 milioni di dollari a causa delle popolazioni di mosca bianca del tabacco^[18]. In tutto il settore agricolo, si ritiene che questo parassita costi allo stato 774 milioni di dollari in tasse perse per le mancate vendite di piante rovinate nel settore privato, 12.540 posti di lavoro persi a causa delle colture rovinate e 112,5 milioni di dollari in reddito personale di lavoratori licenziati a causa delle crisi agricole prodotte da questa mosca. Su scala nazionale, gli Stati Uniti hanno subito danni alle colture e alle piante ornamentali per oltre 1 miliardo di dollari^[18].

Questa specie di mosca bianca è un parassita particolarmente devastante perché si nutre di oltre 500 specie vegetali. Gli ospiti comuni sono colture agricole tra cui pomodori, zucca, broccoli, cavolfiori, cavoli, meloni, cotone, carote, patate dolci, cetrioli e zucche, e piante ornamentali come la stella di Natale, la lagerstroemia, le rose da giardino, la lantana e i gigli. Può causare danni specifici a determinate piante ospiti, come la "foglia d'argento" sulla zucca, la maturazione irregolare dei pomodori, il gambo bianco nei broccoli, nei cavolfiori e nella stella di Natale e la radice chiara nelle carote (ossia la crescita anomala, non sviluppata o verdastra sulla superficie della radice principale della carota)^[18].

Recettori nucleari

B. tabaci come tutti gli artropodi ha recettori ecdisone (EcR) che possono essere utili per lo sviluppo di insetticidi^[19]. Carmichael e altri nel 2005 hanno presentato la cristallografia a raggi X per il ligand-binding ___domain 1Z5X dell'EcR di B. tabaci^[19].

Gestione integrata dei parassiti

Gli scienziati si stanno attualmente concentrando sulla lotta alla mosca bianca attraverso meccanismi che non causano inquinamento o contaminazione (ovvero, meccanismi diversi dagli insetticidi). È importante essere in grado di ridurre il numero di individui di B. tabaci che si insediano sulle piante per ridurre i danni ad esse come quelli causati dalle trasmissioni virali. Ciò può essere ottenuto riducendo l'insediamento, diminuendo l'ovideposizione e frenando lo sviluppo della popolazione^[20].

Controlli biologici

Il controllo biologico classico è stata la migliore soluzione sostenibile a lungo termine per controllare questi parassiti esotici. Tuttavia, il successo di questo metodo può essere imprevedibile^[21].

Gli entomologi dell'US Arid-Land Agricultural Research Center hanno identificato le cause più comuni di morte della mosca bianca come la predazione da parte di altri insetti, il parassitismo e lo spostamento indotto dalle condizioni meteorologiche^[22]. Sottolineano l'importanza di sfruttare l'uso di predatori naturali e hanno identificato i predatori mediante l'uso del test immunoenzimatico (ELISA). È stato scoperto che l'uso di controlli biologici e regolatori della crescita degli insetti produce un rapporto predatore-preda più elevato^[23]. I regolatori della crescita degli insetti, come buprofezina e piriproxifen, conservano i predatori naturali rispetto agli insetticidi convenzionali, che possono uccidere indiscriminatamente sia le popolazioni di predatori che di parassiti^[23].

Nemici naturali

Predatori, parassitoidi e agenti patogeni specifici delle mosche bianche possono tenere sotto controllo le popolazioni.

Si sa che specie appartenenti a 8 ordini di artropodi sono predatori di B. tabaci. Tra queste rientrano membri delle famiglie Phytoseiidae, Coccinellidae, Syrphidae, Anthocoridae, Nabidae e Miridae, Chrysopidae e Coniopterygidae^[24]. Sono disponibili in commercio 4 specie di predatori per il controllo di B. tabaci: Delphastus pusillus, Macrolophus caliginosus, Chrysoperla carnea e C. rufilabris^[24]. D. pusillus è una specie di piccolo coleottero nero e lucido che succhia il contenuto della mosca bianca del tabacco perforandone l'esoscheletro. Gli stadi adulti e larvali di questo coleottero si nutrono di tutti gli stadi vitali del parassita^[24]. C. rufilabris è in grado di nutrirsi solo degli stadi immaturi o degli stadi larvali di B. tabaci^[24].

Un altro nemico naturale della mosca bianca sono i parassitoidi, che uccidono il loro ospite una volta completato il loro sviluppo. I parassitoidi delle famiglie Platygasteridae, Aphelinidae ed Eulophidae sono noti per attaccare le mosche bianche^[24]. L'insediamento di diverse specie del Vecchio Mondo di vespe Eretmocerus è stato tentato negli Stati Uniti occidentali per controllare B. tabaci. Tuttavia, le differenze nelle preferenze climatiche di queste vespe hanno ridotto il loro effetto. I più studiati di questi parassitoidi della mosca bianca sono Encarsia formosa ed Eretmocerus eremicus, entrambi disponibili in commercio. L'Encarsia formosa "Beltsville Strain", tuttavia, non ha avuto successo nel controllo del biotipo B di B. tabaci nelle serre commerciali; è in grado di controllare la specie solo in piccole serre sperimentali^[24]. La specie Encarsia formosa funziona molto meglio nel controllo della specie di mosca bianca Trialeurodes vaporariorum rispetto a B. tabaci. Eretmocerus sp. è stato trovato più efficace su B. tabaci rispetto a E. formosa "Beltsville Strain". Le vespe sono più veloci nella ricerca di aree di ninfe ospiti e sono coerenti nel controllo della popolazione. Una strategia di rilascio variabile di parassitoidi è stata trovata in grado di controllare con successo le popolazioni di B. tabaci. Ciò è stato fatto rilasciando sei parassitoidi femmine a settimana per la prima metà della stagione di crescita e solo una femmina a settimana per il resto della stagione. Ciò ha migliorato l'efficacia delle vespe parassitoidi garantendo che fossero continuamente disponibili ad attaccare i parassiti, ma in numeri che riflettevano la diminuzione della popolazione di parassiti^[24]. Se i nemici naturali non sono in grado di controllare la popolazione di parassiti a bassi livelli a causa di un aumento significativo dei parassiti, un insetticida compatibile con l'agente di controllo biologico potrebbe essere utilizzato per aiutare a ridurre nuovamente la popolazione di parassiti a bassi livelli^[24].

Un altro meccanismo naturale di controllo della popolazione di B. tabaci è l'uso di agenti patogeni fungini. I patogeni più comunemente noti per il parassita della mosca bianca sono Paecilomyces fumosoroseus, Aschersonia aleyrodis, Verticillium lecanii e Beauveria bassiana^[24]. Quando le soluzioni di spore di V. lecanii vengono spruzzate sulle uova di B. tabaci, circa l'89% - 90% di queste uova vengono uccise^[24]. Alcuni ceppi di mosca bianca hanno sviluppato resistenza ai suoi agenti patogeni fungini, tra cui V. lecanii.

B. bassiana è un agente di controllo biologico efficace solo in condizioni di basse temperature (massimo 20 °C) e un livello di umidità superiore al 96%^[24]. Non sono stati condotti studi sufficienti per dimostrare la produttività del patogeno fungino nell'ambiente reale. Gran parte del successo di questo controllo biologico su B. tabaci è stato condotto in laboratorio^[24]. Tuttavia, si può concludere che quando il patogeno fungino viene combinato con un insetticida, l'effetto sinergico dei due indurrà un tasso di mortalità più elevato della mosca bianca. P. fumosoroseus ha un'ampia gamma di ospiti ma può attaccare le mosche bianche del tabacco in una varietà di stadi di vita e questi includono uova, ninfe, pupe e stadi adulti. D'altra parte, A. aleyrodis infetta e distrugge solo ninfe e pupe^[24].

Controlli chimici

Oli naturali

Gli oli naturali sono un altro strumento importante nel controllo di B. tabaci. Attualmente, l'olio più efficace sul mercato è l'olio ultra-fine, un prodotto a base di olio paraffinico che riduce l'insediamento delle mosche adulte, diminuisce l'ovideposizione e attenua la trasmissione del virus del pomodoro TYLCV^[20]. L'effetto dell'olio ultra-fine può essere rafforzato attraverso la combinazione con oli come limonene o citronellale. Anche l'olio d'oliva è altamente efficace nel controllo del numero di mosche bianche. Altri oli naturali come quello di cotone, ricino, arachidi, soia e girasole possono essere efficaci. L'olio di semi di arachidi è stato il più efficace di questo gruppo nel ridurre la popolazione. Tutti questi oli causano mortalità diretta negli stadi di vita immaturi della mosca bianca del tabacco al contatto e riducono l'insediamento e l'ovideposizione degli adulti quando spruzzati sulle foglie delle piante. Anche l'olio estratto dai semi di Annona squamosa si è rivelato efficace contro la mosca bianca^[25]. Questo olio fa sì che la ninfa della mosca bianca del tabacco si riduca di dimensioni e quindi si stacchi dalla pianta di pomodoro, portandola alla fame. Questo olio non è fitotossico per le piante di pomodoro a nessuna concentrazione e riduce il tasso di sopravvivenza del parassita^[25].

Regolatori della crescita degli insetti

Gli insetticidi possono essere costosi e presentano un rischio crescente di resistenza da parte delle mosche bianche. Tuttavia, il regolatore della crescita degli insetti piriproxifen si è dimostrato efficace nel ridurre le popolazioni di mosche bianche sulle piante di curbitacee, tra cui zucchine, cetrioli e zucche^[26]. Questo ormone è un analogo ormonale giovanile, che influenza l'equilibrio ormonale e la chitina negli insetti immaturi e causa deformazione e morte durante la muta e la pupa.

Comandi meccanici

Trappole e coperture artificiali

Le trappole offrono un metodo di controllo di B. tabaci senza pesticidi. La trappola CC dotata di diodo a emissione luminosa (LED-CC) è stata sviluppata dal fisiologo vegetale Chang-Chi Chu e Thomas Henneberry^[27]. Originariamente, la trappola veniva utilizzata per monitorare la popolazione di mosche bianche del tabacco, ma con il miglioramento della trappola è stata utilizzata nei programmi di controllo per limitare le popolazioni di parassiti delle mosche bianche. La trappola stessa include una luce LED verde che attrae e intrappola le mosche bianche. Il dispositivo LED funziona meglio di notte ed è economico e durevole e non danneggia i predatori e i parassitoidi della mosca bianca^[27].

Colture trappola

Un altro importante controllo è l'uso di colture trappola, soprattutto di zucca^[28]. Le mosche bianche del tabacco sono infatti più attratte dalla coltura di zucca che dalla pianta di pomodoro^[28]. Quando la zucca funge da coltura trappola, il virus del pomodoro TYLCV può essere controllato e limitato. Esperimenti scientifici nei campi dimostrano che la coltivazione di zucche intorno alle aree in cui si trovano piante di pomodoro è una manipolazione utile per regolare la popolazione di mosca bianca del tabacco e la trasmissione del TYLCV. Altre piante che possono fungere da colture trappola includono il cantalupo e il cetriolo^[28].

Controlli culturali

Attraverso un metodo di controllo culturale, diverse aree di semina possono limitare la quantità di piante infette da B. tabaci. Piantare diverse colture ospiti distanti l'una dall'altra ridurrà il numero di piante che le mosche saranno in grado di infettare. Pertanto, il controllo migliore è massimizzare la distanza e l'intervallo di tempo tra le colture ospiti^[29]. Una buona igiene nelle colture invernali e primaverili è inoltre necessaria per il mantenimento e il controllo della popolazione di mosche^[29]. Le erbacce e i residui delle colture ospiti devono essere rimossi immediatamente per evitare l'infestazione. Pacciamature di copertura in argento/alluminio possono respingere la mosca bianca adulta. Pertanto, quando si piantano i semi, posizionare una pacciamatura riflettente in polietilene sui letti di semina ridurrà significativamente il tasso di colonizzazione^[29].

I controlli colturali sono molto importanti per colture come ortaggi e frutta. Ad esempio, nella famiglia delle Cucurbitaceae, ortaggi come l'anguria e la zucca contraggono il virus SqVYV dalla mosca bianca del tabacco^[30]. Il virus SqVYV^[30] scoperto dal patologo vegetale Benny Bruton e da Shaker Kousik è essenzialmente una malattia debilitante, che porta al collasso del gambo, causando la morte dell'anguria prima del raccolto. Kousik e il patologo Scott Adkins dell'ARS Subtropical Plant Pathology Research Unit hanno lavorato insieme allo screening del germoplasma dell'anguria per la resistenza a SqVYV al fine di cercare potenziali fonti di resistenza nell'anguria di tipo selvatico. Kousik ha esaminato diverse combinazioni di insetticidi e il telo pacciamante argentato (una pellicola di polietilene con un lato nero e uno argento) che potrebbero essere utilizzati per ridurre le popolazioni di mosca bianca^[30].

Note

1. ^ Mosca bianca del tabacco - Biocontrollo, danni e ciclo vitale, su www.koppert.it. URL consultato il 30 settembre 2025.
2. ^ R. K. Shahzad, M. Hasnain e M. Naeem, Cotton whitefly, in PlantwisePlus Knowledge Bank, Factsheets for Farmers, 2013-01, pp. 20147801355, DOI:10.1079/pwkb.20147801355. URL consultato il 30 settembre 2025.
3. ^ Comprensione della Bemisia tabaci e dei suoi impatti sull'agricoltura, su Agripat, 30 marzo 2023. URL consultato il 30 settembre 2025.
4. Giovanni Cagnano, Trasferimento di geni da piante a insetti, su Missione Scienza, 18 aprile 2021. URL consultato il 30 settembre 2025.
5. (EN) Yuqing Fan e Frederick L. Petitt, Dispersal of the broad mite, Polyphagotarsonemus latus (Acari: Tarsonemidae) on Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae), in Experimental & Applied Acarology, vol. 22, n. 7, 1º luglio 1998, pp. 411–415, DOI:10.1023/A:1006045911286. URL consultato il 30 settembre 2025.
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